ВЛИЯНИЕ МЕТАБОЛИЧЕСКОГО СИНДРОМА НА АРТЕРИИ
Ключевые слова:
морфология, эластические сосуды, метаболический синдромАннотация
В данной статье освещены морфологическое строение магистральных артерий, проблемы фундаментальных аспектов морфологических изменений, наблюдаемых под влиянием внешних факторов. Для понимания патогенеза метаболического синдрома и гиподинамии важно знать морфологические изменения, наблюдаемые при этих патологиях. В последние годы бурное развитие технологий не обошлось без ряда факторов, влияющих на образ жизни людей. В качестве одного из таких факторов можно указать гипокинезию. Не подлежит сомнению, что гипокинезия сегодня является чрезвычайно важной биосоциальной проблемой. В полученных результатах тот факт, что основным морфологическим субстратом являются изменения в виде деструктивных и дефрагментационных изменений в волокнистых структурах сосудистой стенки эластического типа, показал свою научную основу в наших исследованиях.
Библиографические ссылки
Андреева С. А. Возрастное преобразование артериального звена малого круга кровообращения //FORCIPE. – 2022. – Т. 5. – №. 1. – С. 20-26.
Андреевская М. В. и др. Оценка взаимосвязи параметров артериальной жесткости с критериями метаболического синдрома и различными жировыми депо у пациентов с абдоминальным ожирением //Системные гипертензии. – 2020. – Т. 17. – №. 4. – С. 53-60.
Анисимова Л. В. и др. Патоморфологические изменения скелетных мышц при формировании реперфузионного синдрома //Цитология. – 2017. – Т. 59. – №. 3. – С. 236-240.
Батухтина Н. П. и др. Структурная организация паравазальной соединительной ткани внутриорганных кровеносных сосудов сердца в первом периоде зрелого возраста //Вестник новых медицинских технологий. – 2011. – Т. 18. – №. 2. – С. 41-43.
Бекташев И. Б. У., Кодирова Г. И. Морфофункциональные изменения сосудов при гипертонической болезни //Science and innovation. – 2022. – Т. 1. – №. Special Issue 2. – С. 589-593.
Белобороденко Т. А. Влияние дефицита двигательной активности на морфофункциональное состояние мышц и репродуктивный аппарат животных //Вестник Курской государственной сельскохозяйственной академии. – 2014. – №. 1. – С. 74-76.
Бирулина Ю. Г. и др. Морфологические изменения в сердце и аорте крыс при диет-индуцированном метаболическом синдроме //Бюллетень сибирской медицины. – 2022. – Т. 21. – №. 3. – С. 13-21.
Должиков А. А. и др. Функциональная и клиническая морфология пространств Вирхова-Робина: от первоисточника до новейших теорий //Человек и его здоровье. – 2022. – №. 2. – С. 70-82.
Зулькарнаев Т. Р., Агафонов А. И., Каюмов Ф. А. Влияние физической нагрузки различной интенсивности и гиподинамии на морфологические показатели внутренних органов в эксперименте //Гигиена и санитария. – 2014. – Т. 93. – №. 4. – С. 104-106.
Косарева Т. С. и др. Роль эндотелиальных клеток синусоидальных сосудов печени и внутрипеченочной гемодинамики в развитии неалкогольной жировой болезни печени (обзор литературы) //Вятский медицинский вестник. – 2023. – Т. 77. – №. 1. – С. 90-95.
Косыгина А. В. Адипоцитокины в научной и клинической практике. //Ожирение и метаболизм. 2011;1:32-39.
Крылов Д. П. и др. Экспериментальные модели для исследования структурно-функционального состояния печени при развитии патологии (обзор) //Современные технологии в медицине. – 2023. – Т. 15. – №. 4. – С. 65-84.
Порублев В. Сравнительная и возрастная морфология кишечника и его артериального русла у овец и коз. – Litres, 2022.
Пулатова Ш. Х. и др. Артериальная гипертония, ассоциированная с метаболическим синдромом: особенности течения и поражения органов-мишеней //Наука и инновации-современные концепции. – 2020. – С. 72-79.
Сакибаев К. Ш., Тулекеев Т. М. Гетероморфная микроанатомия морфологических элементов плаценты жительниц различных биогеохимических зон //Морфология. – 2008. – Т. 133. – №. 2. – С. 117c-117c.
Хидоятова М. Р., Каюмов У. К. Морфологические изменения коронарных сосудов при COVID-19 : дис. – Uzbekistan, 2022.
Хусаинов А. Э. и др. Влияние физической активности на морфологические показатели крови студентов медицинского вуза //Медицина труда и экология человека. – 2023. – С. 68.
Ahmed A, Bibi A, Valoti M, Fusi F. Perivascular Adipose Tissue and Vascular Smooth Muscle Tone: Friends or Foes? //Cells. 2023 Apr 20;12(8):1196.
Ahmed A., Fusi F., Valoti M. Perivascular adipose tissue modulates the effects of flavonoids on rat aorta rings: Role of superoxide anion and β(3) receptors.// Pharmacol. Res. 2022;180:21.
Albrecht ED, Pepe GJ. Regulation of Uterine Spiral Artery Remodeling: a Review. //Reprod Sci. 2020 Oct;27(10):1932-1942.
Albu M, Şeicaru DA, Pleşea RM, Mirea OC, Gherghiceanu F, Grigorean VT, Cordoş I, Liţescu M, Pleşea IE, Şerbănescu MS. Assessment of the aortic wall histological changes with ageing.// Rom J Morphol Embryol. 2021 Jan-Mar;62(1):85-100.
Angueira A.R., Sakers A.P., Holman C.D., Cheng L., Arbocco M.N., Shamsi F., Lynes M.D., Shrestha R., Okada C., Batmanov K., et al. Defining the lineage of thermogenic perivascular adipose tissue. //Nat. Metabol. 2021;3:469–484.
Bucerius J., Dijkgraaf I., Mottaghy F.M., Schurgers L.J. Target identification for the diagnosis and intervention of vulnerable atherosclerotic plaques beyond 18F-fluorodeoxyglucose positron emission tomography imaging: Promising tracers on the horizon. // Eur. J. Nucl. Med. Mol Imaging. 2019;46:251–265.
Cao Z.F.H., Stoffel E., Cohen P. Role of Perivascular Adipose Tissue in Vascular Physiology and Pathology. //Hypertension. 2017;69:770–777.
Chang L., Garcia-Barrio M.T., Chen Y.E. Perivascular Adipose Tissue Regulates Vascular Function by Targeting Vascular Smooth Muscle Cells. //Arterioscler. Thromb. Vasc. Biol. 2020;40:1094–1109.
Cheng C.K., Bakar H.A., Gollasch M., Huang Y. Perivascular Adipose Tissue: The Sixth Man of the Cardiovascular System. Cardiovasc. Drugs Ther. 2018;32:481–502.
Cooper IR, Liu S, DeLorey DS. Effects of sex and exercise training on β-adrenoreceptor-mediated opposition of evoked sympathetic vasoconstriction in resting and contracting muscle of rats.// J Appl Physiol 2021 Jan 1;130(1):114-123.
Corvera S. Cellular Heterogeneity in Adipose Tissues. //Annu. Rev. Physiol. 2021;83:257–278.
Da Costa R.M., Fais R.S., Dechandt C.R.P., Louzada-Junior P., Alberici L.C., Lobato N.S., Tostes R.C. Increased mitochondrial ROS generation mediates the loss of the anti-contractile effects of perivascular adipose tissue in high-fat diet obese mice. //Br. J. Pharmacol. 2017;174:3527–3541.
Diglio CA, Grammas P, Giacomelli F, Wiener J. Rat cerebral microvascular smooth muscle cells in culture.//J Cell Physiol. 1986 Nov;129(2):131-41
Feriani A., Bizzarri M., Tir M., Aldawood N., Alobaid H., Allagui M.S. et al. High-fat diet-induced aggravation of cardiovascular impairment in permethrin-treated Wistar rats. //Ecotoxicol. Environ. Saf. 2021;222:112461.
Fu M., Xu L., Chen X., Han W., Ruan C., Li J., Cai C., Ye M., Gao P. Neural Crest Cells Differentiate Into Brown Adipocytes and Contribute to Periaortic Arch Adipose Tissue Formation. Arterioscler. //Thromb. Vasc. Biol. 2019;39:1629–1644.
Gaidzik F, Korte J, Saalfeld S, Janiga G, Berg P. Image-based hemodynamic simulations for intracranial aneurysms: the impact of complex vasculature. //Int J Comput Assist Radiol Surg. 2024 Jan 11
Guo Y, Wang S, Liu Y, Fan L, Booz GW, Roman RJ, Chen Z, Fan F. Accelerated cerebral vascular injury in diabetes is associated with vascular smooth muscle cell dysfunction. //Geroscience. 2020 Apr;42(2):547-561
Hillock-Watling C., Gotlieb A.I. The pathobiology of perivascular adipose tissue (PVAT), the fourth layer of the blood vessel wall. //Cardiovasc. Pathol. 2022;61:107459.
Hou J, Li X, Li Z, Yin L, Chen X, Liang F. An In Vivo Data-Based Computational Study on Sitting-Induced Hemodynamic Changes in the External Iliac Artery.// J Biomech Eng. 2022 Feb 1;144(2):021007.
and mitochondrial oxidative stress in the cardiac alterations in diet-induced obesity in rats. //Cells. 2020;9(2):451.
Just TP, DeLorey DS. Exercise training and α1-adrenoreceptor-mediated sympathetic vasoconstriction in resting and contracting skeletal muscle. //Physiol Rep. 2016 Feb;4(3):e12707.
Koller A, Szenasi A, Dornyei G, Kovacs N, Lelbach A, Kovacs I. Coronary Mi-crovascular and Cardiac Dysfunction Due to Homocysteine Pathometabolism; A Complex Therapeutic Design. //Curr Pharm Des. 2018;24(25):2911-2920
Kumar R.K., Jin Y., Watts S.W., Rockwell C.E. Naïve, Regulatory, Activated, and Memory Immune Cells Co-exist in PVATs That Are Comparable in Density to Non-PVAT Fats in Health. //Front. Physiol. 2020;11:58.
Lai YC, Wang L, Gladwin MT. Insights into the pulmonary vascular complications of heart failure with pre-served ejection fraction.// J Physiol. 2019 Feb;597(4):1143-1156.
Leandro A., Azul L., Fernandes R., Seiça R., Sena C. Contribution of perivascular adipose tissue to vascular dysfunction in type 2 diabetes. //Free Rad. Biol. Med. 2018;120:S162.
Lee RM. Morphology of cerebral arteries. //Pharmacol Ther. 1995 Apr;66(1):149-73.
Leonardi B.F., Gosmann G., Zimmer A.R. Modeling diet-induced metabolic syndrome in rodents. //Mol. Nutr. Food Res.2020;64(22):2000249
Diet-Induced Type 2 Diabetic Mice. //Diabetes Metab Syndr Obes. 2022 Sep 28;15:2991-3005.
Logvinov S.V., Naryzhnaya N.V., Kurbatov B.K., Gorbunov A.S., Birulina Y.G., Maslov L.L. et al. High carbohydrate high fat diet causes arterial hyperten-sion and histological changes in the aortic wall in aged rats: The involvement of connective tissue growth factors and fibronectin. //Exp. Gerontol. 2021;154:111543.
Löhn M., Dubrovska G., Lauterbach B., Luft F.C., Gollasch M., Sharma A.M. Periadventitial fat releases a vascular relaxing factor. FASEB J. 2002;16:1057–1063.
Miao C.Y., Li Z.Y. The role of perivascular adipose tissue in vascular smooth muscle cell growth. //Br. J. Pharmacol. 2012;165:643–658.
Milutinović A., Šuput D., Zorc-Pleskovič R. Pathogenesis of atherosclerosis in the tunica intima, media, and adventitia of coronary arteries: An updated review. //Bosn. J. Basic Med. Sci. 2020;20:21–30.
Nava E., Llorens S. The Local Regulation of Vascular Function: From an Inside-Outside to an Outside-Inside Model. //Front. Physiol. 2019;10:729.
Nosalski R., Guzik T.J. Perivascular adipose tissue inflammation in vascular disease. //Br. J. Pharmacol. 2017;174:3496–3513.
Qi X.Y., Qu S.L., Xiong W.H., Rom O., Chang L., Jiang Z.S. Perivascular adipose tissue (PVAT) in atherosclerosis: A double-edged sword.// Cardiovasc. Diabetol. 2018;17:134.
Qiu T., Li M., Tanner M.A., Yang Y., Sowers J.R., Korthuis R.J., Hill M.A. Depletion of dendritic cells in perivascular adipose tissue improves arterial relaxation responses in type 2 diabetic mice. //Metab. Clin. Exp. 2018;85:76–89.
Rajsheker S., Manka D., Blomkalns A.L., Chatterjee T.K., Stoll L.L., Weintraub N.L. Crosstalk between perivascular adipose tissue and blood vessels. //Curr. Opin. Pharmacol. 2010;10:191–196.
Ramirez J.G., O’Malley E.J., Ho W.S.V. Pro-contractile effects of perivascular fat in health and disease. //Br. J. Pharmacol. 2017;174:3482–3495.
Ramírez-Hernández D, López-Sánchez P, Lezama-Martínez D, Kuyoc-Arroyo NM, Rodríguez-Rodríguez JE, Fonseca-Coronado S, Valencia-Hernández I, Flores-Monroy J. Timing Matters: Effects of Early and Late Estrogen Replacement Therapy on Glucose Metabolism and Vascular Reactivity in Ovariectomized Aged Wistar Rats. //J Renin Angiotensin Aldosterone Syst. 2023 Nov 15;2023:6683989
Roloff EVL, Walas D, Moraes DJA, Kasparov S, Paton JFR. Differences in autonomic innervation to the vertebrobasilar arteries in spontaneously hypertensive and Wistar rats.// J Physiol. 2018 Aug;596(16):3505-3529.
Ruan X.-H., Ma T., Fan Y. Abla-tion of TMEM126B protects against heart injury via improving mitochondrial function in high fat diet (HFD)-induced mice. //Biochem. Biophys. Res. Commun. 2019;515(4):636–643.
Sahraoui A., Dewachter C., Vegh G., Mc Entee K., Naeije R., Bouguerra S.A. et al. High fat diet altered cardiac metabolic gene profile in Psammomys obesus gerbils. Lipids Health Dis. 2020;19(1):123.
Saraf R., Huang T., Mahmood F., Owais K., Bardia A., Khab baz K.R. et al. Early cellular changes in the ascend-ing aorta and myocardium in a swine model of metabolic syndrome. //PLoS One. 2016;11(1):e0146481.
Saxton S.N., Withers S.B., Heagerty A.M. Perivascular Adipose Tissue Anticontractile Function Is Mediated by Both Endothelial and Neuronal Nitric Oxide Synthase Isoforms.// J. Vasc. Res. 2022;59:288–302.
Sheng Y., Zhu L. The crosstalk between autonomic nervous system and blood vessels. Int. J. Physiol. Pathophysiol. Pharmacol. 2018;10:17–28
Soltis E.E., Cassis L.A. Influence of perivascular adipose tissue on rat aortic smooth muscle responsiveness. //Clin. Exp. Hypertens. A. 1991;13:277–296.
Stanek A., Brożyna-Tkaczyk K., Myśliński W. The Role of Obesity-Induced Perivascular Adipose Tissue (PVAT) Dysfunction in Vascular Homeostasis. //Nutrients. 2021;13:3843.
Tang C, Zhang H, Border JJ, Liu Y, Fang X, Jefferson JR, Gregory A, Johnson C, Lee TJ, Bai S, Sharma A, Shin SM, Yu H, Roman RJ, Fan F. Impact of knockout of dual-specificity protein phosphatase 5 on structural and mechanical properties of rat middle cerebral arteries: implications for vascular aging. //Geroscience. 2024 Jan 10.
Taqueti VR, Di Carli MF. Coronary Microvascular Disease Pathogenic Mecha-nisms and Therapeutic Options: JACC State-of-the-Art Review. //J Am Coll Cardiol. 2018 Nov 27;72(21):2625-2641
